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抗衰老-氧化存活
一、实验目的
氧化胁迫被认为是在高浓度的活性氧,如超氧自由基、羟基自由基和过氧化氢等情况下,出现的脂质、蛋白质和核酸等生物大分子的氧化损伤,以及细胞新陈代谢被破坏的一种状态。活性氧自由基(ROS)是氧化胁迫产生的主要物质基础,产生于细胞正常的新陈代谢过程中。正常生理条件下,机体可以通过抗氧化防御系统,如抗氧化酶等使ROS保持在一个适当的水平,以正常行使其调节细胞功能的生理学作用。当 ROS的产生与清除系统功能失衡,或者机体受到外界环境或胁迫条件的影响,如紫外照射、氧化剂处理等,会产生过多的活性氧自由基,造成氧化胁迫,导致非特异性细胞损伤,破坏细胞功能,影响新陈代谢。秀丽隐杆线虫具有生命周期短、遗传资源丰富、关键信号通路与人类高度同源、实验操作与维护简单等优点。该测试项目评价样品对线虫氧化存活的影响,评价其抗氧化的功效。
二、建模原理
百草枯和过氧化氢能够高效诱导线虫体内产生大量活性氧(ROS),从而模拟氧化应激的病理状态。
三、实验方案
3.1 最大检测浓度摸索
①实验动物:同步化的L4期野生型N2线虫。
②实验分组:对照组、每个样品3个剂量组。
③实验方法:将L4期野生型N2线虫转移到按表1体系配制的96孔板中,在20 ℃、120 rpm条件下培养48 h以后,在倒置显微镜下观察并记录线虫是否存在大量死亡的现象。每组线虫数量不少于30条。
表1 MTC实验培养体系
组别 | 浓度 | Vsample (μL) | VNA22 (μL) | V5-FUdR (μL) | VAMP (μL) | Vworms (μL) | VS Medium (μL) |
对照组 | 0 | 0 | 10 | 1.5 | 2 | 20 | 66.5 |
样品组 | a mg/mL | b | 10 | 1.5 | 2 | 20 | 66.5-b |
3.2 样品对百草枯氧化存活的影响
①实验动物:同步化的L4期野生型N2线虫。
②实验分组:对照组、每个样品1个剂量组。
③实验方法:移取同步化的L4期野生型N2线虫到按表2体系配置的96孔板(每孔总体积100 μL)中。孔板中AMP的终浓度为100 μg/mL、5-FUdR的终浓度为75 μg/mL以及NA22的终浓度约为0.5(OD 570 nm),控制每孔10-15条线虫加入到孔板中,每组设置6个复孔。在20 ℃、120 rpm条件下培养24 h后,向每组中加入终浓度为50 mM的百草枯溶液进行造模处理,继续在20 ℃、120 rpm条件下培养。此时对秀丽线虫计数,此后每12 h进行一次计数,直至线虫全部死亡。
表2 氧化存活实验培养体系
组别 | 浓度 | Vsample (μL) | VNA22 (μL) | V5-FUdR (μL) | VAMP (μL) | Vworms (μL) | VS Medium (μL) |
对照组 | 0 | 0 | 10 | 1.5 | 2 | 20 | 66.5 |
样品组 | a mg/mL | b | 10 | 1.5 | 2 | 20 | 66.5-b |
④检测指标:百草枯氧化存活。
3.3 样品对过氧化氢氧化存活的影响
①实验动物:同步化的L4期野生型N2线虫。
②实验分组:对照组、每个样品1个剂量组。
③实验方法:移取同步化的L4期野生型N2线虫到按表2体系配置的96孔板(每孔总体积100 μL)中。孔板中AMP的终浓度为100 μg/mL、5-FUdR的终浓度为75 μg/mL以及NA22的终浓度约为0.5(OD 570 nm),控制每孔10-15条线虫加入到孔板中,每组设置6个复孔。在20 ℃、120 rpm条件下培养24 h后,向每组中加入终浓度为5 mM的过氧化氢溶液进行造模处理,继续在20 ℃、120 rpm条件下培养。此时对秀丽线虫计数,此后每2 h进行一次计数,直至线虫全部死亡。
④检测指标:过氧化氢氧化存活。
